Синтез ансамблів сукцинильованих похідних інтерлейкіну-2 та їх біологічна активність in vitro

Автор(и)

  • Artur Martynov Державної установи «Інститут мікробіології та імунології ім. І. І. Мечникова Національної академії медичних наук України» вул. Пушкінська, 14, м. Харків, Украина, 61057, Україна
  • Boris Farber Noigel LLC. Noigel, LLC., Inc. 1781 East 17th Street Suite #D6, Brooklyn, NY 11229 USA, США
  • Sophia Farber Noigel, LLC., Inc. 1781 East 17th Street Suite #D6, Brooklyn, NY 11229 USA Тел: +1-718-787-1888, США
  • Tatiana Kabluchko Державної установи «Інститут мікробіології та імунології ім. І. І. Мечникова Національної академії медичних наук України» вул. Пушкінська, 14, м. Харків, Украина, 61057, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15587/2313-8416.2015.53985

Ключові слова:

Agilent-2100, біологічна активність, сукцинильований інтерлейкін-2, високоефективної рідинної хроматографії, рекомбінантний інтерлейкін-2

Анотація

Мета: дослідити біологічну активність комбінаторних сукцинильованих похідних інтерлейкіну-2 (IL-2). Ацилювання з різними ступенями ацилювання IL-2 проводили з використанням бурштинового ангідриду, з утворенням складного ансамблю із багатьох похідних (квазі-жива структура, здатна до самоорганізації).

Методи: У дослідженні використовували рекомбінантний інтерлейкін-2 (IL-2) (Ronkoleukin, Росія) в окисненій формі та інші реагенти Sigma-Aldrich і Fluka (США). Для ацилювання використовували рекомбінантний IL-2 у вигляді матричної рідини з концентрацією білка 0,6 мг/мл. Матричний розчин IL-2 був доведений до рН 8,0 шляхом додавання 0,01 % розчину гідроксиду натрію. Синтезований ансамбль сукцініл-IL-2 аналізували за допомогою капілярного гель-електрофорезу на приладі Agilent- 2100 Bioanalyzer. Молекулярні маси синтезованого ансамблю аналізували у порівнянні зі стандартними зразками низькомолекулярних білків Bioanalyzer (Ladder). Додатковий негативний заряд модифікованого IL-2 визначали за допомогою FPLC (швидкої рідинної хроматографії протеїнів) системи від Pharmacia (Woerden, Нідерланди). CTLL-2, мишача ІЛ-2-залежна клітинна лінія, була отримана з Biokontrol (Київ, Україна). Ці клітини були використані в аналізі рівню проліферації (реакція бластної странсформації або БТЛ) в порівнянні активності IL-2 і сукцинильованих похідних IL-2. Для статистичного аналізу даних був використаний дисперсійний аналіз.

Результати: клітинна лінія CTLL-2 була оброблена різними концентраціями похідних Suc-IL-2. Найвищий рівень біологічної активності мав Suc-IL-2 з чотирма модифікованих залишків лізину. Таким чином, сукцинильоване похідне IL-2 з чотирма заміщеними залишками лізину може бути використане в розробці майбутніх імунотропних протиракових засобів.

Висновки: Десятикратне збільшення біологічної активності IL-2 спостерігалося після часткового сукцинилювання його структури. Це явище можна використовувати в розробці нових біотехнологічних препаратів на основі похідних IL-2 для зменшення концентрації основної активної речовини в лікарській формі при тій же біологічній активності та для розширення спектру активности інтерлейкіну-2

Біографії авторів

Artur Martynov, Державної установи «Інститут мікробіології та імунології ім. І. І. Мечникова Національної академії медичних наук України» вул. Пушкінська, 14, м. Харків, Украина, 61057

Доктор фармацевтичних наук, професор

Завідуючий лабораторії та клінічного відділу молекулярної імунофармакології (ЛКВМІ)

Boris Farber, Noigel LLC. Noigel, LLC., Inc. 1781 East 17th Street Suite #D6, Brooklyn, NY 11229 USA

Доктор технічних наук, профессор

Президент Noigel LLC.

Sophia Farber, Noigel, LLC., Inc. 1781 East 17th Street Suite #D6, Brooklyn, NY 11229 USA Тел: +1-718-787-1888

Старший дослідник

Noigel, LLC.

Tatiana Kabluchko, Державної установи «Інститут мікробіології та імунології ім. І. І. Мечникова Національної академії медичних наук України» вул. Пушкінська, 14, м. Харків, Украина, 61057

Старший лаборант

Лабораторія і клінічний відділ молекулярної иммунофармакологии (ЛКОМИ)

Посилання

Adibzadeh, M., Weder, H. G., Rehbein, A., Schwuléra, U., Obermeier, J., Pawelec, G. (1992). Activity of liposomal interleukin-2 in vitro. Mol. Biother. 4 (1), 24–28.

Okuno, K., Nakamura, K., Tanaka, A., Yachi, K., Yasutomi, M. (1998). Hepatic immunopotentiation by galactose-entrapped liposomal IL-2 compound in the treatment of liver metastases. Surg Today, 28 (1), 64–69. doi: 10.1007/bf02483610

Apisarnthanarax, N., Talpur, R., Duvic, M. (2002). Treatment of Cutaneous T Cell Lymphoma. American Journal of Clinical Dermatology, 3 (3), 193–215. doi: 10.2165/00128071-200203030-00006

Martynov, A. V., Smelyanskaya, M. V. (2005). Antiproliferative Properties of Chemically Modified Recombinant IFN-α2b. Journal of Interferon & Cytokine Research, 25 (7), 414–417. doi: 10.1089/jir.2005.25.414

Koppenhagen, F. J., Storm, G., Underberg, W. J. M. (1998). Development of a routine analysis method for liposome encapsulated recombinant interleukin-2. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications, 716 (1-2), 285–291. doi: 10.1016/s0378-4347(98)00271-0

Hank, J. A., Surfus, J., Gan, J., Albertini, M., Lindstrom, M., Schiller, J. H., Hotton, K. M., Khorsand, M., Sondel, P. M. (1999). Distinct Clinical and Laboratory Activity of Two Recombinant Interleukin-2 Preparations. Clin. Cancer Res., 5 (2), 281–292.

Arkin, M. R., Randal, M., DeLano, W. L., Hyde, J., Luong, T. N., Oslob, J. D. et. al (2003). Binding of small molecules to an adaptive protein-protein interface. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100 (4), 1603–1608. doi: 10.1073/pnas.252756299

Rosenberg, S. A. (1988). New Approaches to the Immunotherapy of Cancer Using Interleukin-2. Annals of Internal Medicine, 108 (6), 853. doi: 10.7326/0003-4819-108-6-853

Kohler, P. C., Hank, J. A., Moore, K. H., Storer, B., Bechhofer, R., Sondel, P. M. (1987). Phase I clinical evaluation of recombinant interleukin-2. Prog. Clin. Biol. Res., 244, 161–172.

Lotze, M. T., Matory, Y. L., Rayner, A. A., Ettinghausen, S. E., Vetto, J. T., Seipp, C. A., Rosenberg, S. A. (1986). Clinical effects and toxicity of interleukin-2 in patients with cancer. Cancer, 58 (12), 2764–2772. doi: 10.1002/1097-0142(19861215)58:12<2764::aid-cncr2820581235>3.0.co;2-z

Gearing, A. J. H., Thorpe, R. (1988). The international standard for human interleukin-2. Journal of Immunological Methods, 114 (1-2), 3–9. doi: 10.1016/0022-1759(88)90145-7

Salunkhe, S., Soorapaneni, S., Prasad, K. S., Raiker, V. A., Padmanabhan, S. (2010). Strategies to maximize expression of rightly processed human interferon α2b in Pichia pastoris. Protein Expression and Purification, 71 (2), 139–146. doi: 10.1016/j.pep.2010.02.007

Cohen, J. (1992). A power primer. Psychological Bulletin, 11 2(1), 155–159. doi: 10.1037/0033-2909.112.1.155

Arkin, M. R., Randal, M., DeLano, W. L., Hyde, J., Luong, T. N., Oslob, J. D. et. al (2003). Binding of small molecules to an adaptive protein-protein interface. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100 (4), 1603–1608. doi: 10.1073/pnas.252756299

##submission.downloads##

Опубліковано

2015-11-29

Номер

Розділ

Фармацевтичні науки