Аналіз результатів цитологічного дослідження при вульварній інтраепітеліальній неоплазії в порівнянні з гістологічним заключенням

Автор(и)

  • Вікторія Вікторівна Дунаєвська State Institution «Institute of Pediatrics Obstetrics and Gynecology named academic E. M. Lukyanova National Academy of Medical Sciences of Ukraine»; Державна установа "Інститут педіатрії, акушерства і гінекології імені академіка О. М. Лук'янової Національної академії медичних наук України", Україна https://orcid.org/0000-0003-2949-7623
  • Євгенія Олександрівна Логінова Національний інститут раку, Україна http://orcid.org/0000-0002-7674-8088
  • Павліна Миколаївна Боцюн Медична лабораторія «CSD» , Україна http://orcid.org/0000-0002-4817-7150
  • Наталія Володимирівна Богоніс Національного інституту раку, Україна http://orcid.org/0000-0001-5789-8040

DOI:

https://doi.org/10.15587/2519-4798.2022.263490

Ключові слова:

вульварна інтраепітеліальна неоплазія, вульвоскопія, плоскоклітинний рак, диференційований тип, звичайний тип

Анотація

Своєчасна діагностика та ефективне лікування передракових захворювань жіночих статевих органів запобігають розвитку онкогінекологічних захворювань. Вульварна інтраепітеліальна неоплазія являє собою передракове захворювання, що характеризується ураженням багатошарового плоского епітелію з порушенням дозрівання і нормального зроговіння клітин, але без включення в патологічний процес базальної мембрани. Основними методами діагностики вульварної інтраепітеліальної неоплазії є вульвоскопія, цитологічне та гістологічне дослідження.

Метою даної роботи була оцінка клінічної значущості та ефективності застосування різних методів забору для цитологічного дослідження в порівнянні з гістологічним заключенням.

Матеріали та методи. У дослідження було залучено 235 жінок віком 35-79 років, середній вік яких становив 57±11,3 років, зі скаргами на біль, печіння, дискомфорт та свербіж в області вульви. Всім пацієнткам було проведено просту вульвоскопію, де було відмічено атрофію слизової, часткову або повну втрату клітора та/або малих статевих губ, тріщини, екхімози (крововиливи), ерозовані поверхні, екзофітні розростання від 1 до 5 см. Забір матеріалу здійснювали різними методами.

Результати. За результатами проведеного дослідження значної відмінності між методами цитологічного забору не спостерігали. Цитологічний висновок порівнювали з результатом гістологічного дослідження біоптатів. За результатами гістологічного заключення, у 35 пацієнток був виявлений плоскоклітинний рак вульви, та гіперкератоз у решти 200 пацієнток. За результатами цитологічного дослідження плоскоклітинний рак вульви було виявлено у 12 пацієнток, у 5 жінок відмічено атрофію та у решти 218 жінок цитологічно виявлені плоскоепітеліальні лусочки.

Висновки. Чутливість та специфічність цитологічних методів дослідження виявились високими при наявності ерозованих поверхонь та екзофітних уражень. Цитологічні методи досліджень є не досить інформативними для виявлення раку вульви, який знаходиться в товщі гіперкератозу і був діагностований у 5,1 % пацієнток. Тому для достовірності результатів і підтвердження діагнозу необхідне проведення гістологічних досліджень, за допомогою яких у 14,9 % пацієнток діагностували плоскоклітинний рак

Біографії авторів

Вікторія Вікторівна Дунаєвська, State Institution «Institute of Pediatrics Obstetrics and Gynecology named academic E. M. Lukyanova National Academy of Medical Sciences of Ukraine»; Державна установа "Інститут педіатрії, акушерства і гінекології імені академіка О. М. Лук'янової Національної академії медичних наук України"

Кандидат медичних наук, лікар онколог гінеколог

Старший науковий співробітник

Відділення ендокринної гінекології

Євгенія Олександрівна Логінова, Національний інститут раку

Кандидат біологічних наук, лікар-цитолог вищої категорії, завідувач лабораторії

Лабораторія цитологічної діагностики

Павліна Миколаївна Боцюн, Медична лабораторія «CSD»

Лікар-лаборант (цитопатолог), MIAC, завідувачка лабораторії

Лабораторія цитопатології

Наталія Володимирівна Богоніс, Національного інституту раку

Біолог

Лабораторії цитологічної діагностики

Посилання

  1. Weiderpass, E., Labrèche, F. (2012). Malignant Tumors of the Female Reproductive System. Safety and Health at Work, 3 (3), 166–180. doi: http://doi.org/10.5491/shaw.2012.3.3.166
  2. Medhin, L. B., Tekle, L. A., Achila, O. O., Said, S. (2020). Incidence of Cervical, Ovarian and Uterine Cancer in Eritrea: Data from the National Health Laboratory, 2011-2017. Scientific Reports, 10 (1). doi: http://doi.org/10.1038/s41598-020-66096-5
  3. Triarico, S., Capozza, M. A., Mastrangelo, S., Attinà, G., Maurizi, P., Ruggiero, A. (2020). Gynecological cancer among adolescents and young adults (AYA). Annals of Translational Medicine, 8 (6), 397–397. doi: http://doi.org/10.21037/atm.2020.02.41
  4. Kang, Y., Smith, M., Barlow, E., Coffey, K., Hacker, N., Canfell, K. (2017). Vulvar cancer in high‐income countries: Increasing burden of disease. International Journal of Cancer, 141 (11), 2174–2186. doi: http://doi.org/10.1002/ijc.30900
  5. Rogers, L. J., Cuello, M. A. (2018). Cancer of the vulva. International Journal of Gynecology & Obstetrics, 143, 4–13. doi: http://doi.org/10.1002/ijgo.12609
  6. Ciavattini, A., Clemente, N., Tsiroglou, D., Sopracordevole, F., Serri, M., Delli Carpini, G. et. al. (2017). Follow up in women with biopsy diagnosis of cervical low-grade squamous intraepithelial lesion (LSIL): how long should it be? Archives of Gynecology and Obstetrics, 295 (4), 997–1003. doi: http://doi.org/10.1007/s00404-017-4335-7
  7. Abdulaziz, A. M. A., You, X., Liu, L., Sun, Y., Zhang, J., Sun, S. et. al. (2021). Management of high-grade squamous intraepithelial lesion patients with positive margin after LEEP conization. Medicine, 100 (20), e26030. doi: http://doi.org/10.1097/md.0000000000026030
  8. Yan, P., Du, H., Wang, C., Song, F., Huang, X., Luo, Y., Wu, R. (2021). Differential diagnosis of high-grade squamous intraepithelial lesions and benign atrophy in older women using p16 immunocytochemistry. Gynecology and Obstetrics Clinical Medicine, 1 (1), 14–18. doi: http://doi.org/10.1016/j.gocm.2020.10.005
  9. Cohen, P. A., Anderson, L., Eva, L., Scurry, J. (2019). Clinical and molecular classification of vulvar squamous pre-cancers. International Journal of Gynecologic Cancer, 29 (4), 821–828. doi: http://doi.org/10.1136/ijgc-2018-000135
  10. Preti, M., Scurry, J., Marchitelli, C. E., Micheletti, L. (2014). Vulvar intraepithelial neoplasia. Best Practice & Research Clinical Obstetrics & Gynaecology, 28 (7), 1051–1062. doi: http://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2014.07.010
  11. Thuijs, N. B., Beurden, M., Bruggink, A. H., Steenbergen, R. D. M., Berkhof, J., Bleeker, M. C. G. (2020). Vulvar intraepithelial neoplasia: Incidence and long‐term risk of vulvar squamous cell carcinoma. International Journal of Cancer, 148 (1), 90–98. doi: http://doi.org/10.1002/ijc.33198
  12. Hoang, L. N., Park, K. J., Soslow, R. A., Murali, R. (2016). Squamous precursor lesions of the vulva: current classification and diagnostic challenges. Pathology, 48, 291–302. doi: http://doi.org/10.1016/j.pathol.2016.02.015
  13. Del Pino, M., Rodriguez-Carunchio, L., Ordi, J. (2013). Pathways of vulvar intraepithelial neoplasia and squamous cell carcinoma. Histopathology, 62 (1), 161–175. doi: http://doi.org/10.1111/his.12034
  14. Chulkova, O. V., Novikova, E. G. (2017). Features of a clinical progression of premalignant and vulvar cancer at young people. Obstetrics and gynecology: news, opinions, training, 1, 83–88.
  15. Pakharukova, M. I., Kotugina, M. A., Vainberg, E. I. (2021). Analyzing the differences between the cytological and histological methods in the vulva malignant neoplasm diagnosis. Clin. exp. Morphology, 10 (1), 41–49. doi: http://doi.org/10.31088/cem2021.10.1.41-49
  16. Jiménez-Ayala, M., Jiménez-Ayala, B. (2002). Terminology for Vulvar Cytology Based on the Bethesda System. Acta Cytologica, 46 (4), 645–650. doi: http://doi.org/10.1159/000326969
  17. Bae-Jump, V. L., Bauer, M., Van Le, L. (2007). Cytological Evaluation Correlates Poorly with Histological Diagnosis of Vulvar Neoplasias. Journal of Lower Genital Tract Disease, 11 (1), 8–11. doi: http://doi.org/10.1097/01.lgt.0000229566.57482.f3
  18. Piaton, E., Fabre, M., Goubin-Versini, I., Bretz-Grenier, M.-F., Courtade-Saïdi, M., Vincent, S. et. al. (2015). Recommandations techniques et règles de bonne pratique pour la coloration de May-Grünwald-Giemsa : revue de la littérature et apport de l’assurance qualité. Annales de Pathologie, 35 (4), 294–305. doi: http://doi.org/10.1016/j.annpat.2015.05.019
  19. Dasgupta, S., Ewing-Graham, P. C., van Kemenade, F. J., van Doorn, H. C., Noordhoek Hegt, V., Koljenović, S. (2018). Differentiated vulvar intraepithelial neoplasia (dVIN): the most helpful histological features and the utility of cytokeratins 13 and 17. Virchows Archiv, 473 (6), 739–747. doi: http://doi.org/10.1007/s00428-018-2436-8
  20. Lai, M., Lü, B. (2012). Tissue Preparation for Microscopy and Histology. Comprehensive Sampling and Sample Preparation, 3, 53–93. doi: http://doi.org/10.1016/b978-0-12-381373-2.00070-3
  21. Siebers, A. G., Klinkhamer, P. J. J. M., Arbyn, M., Raifu, A. O., Massuger, L. F. A. G., Bulten, J. (2008). Cytologic Detection of Cervical Abnormalities Using Liquid-Based Compared With Conventional Cytology. Obstetrics & Gynecology, 112 (6), 1327–1334. doi: http://doi.org/10.1097/aog.0b013e31818c2b20
  22. Iaconis, L., Hyjek, E., Ellenson, L. H., Pirog, E. C. (2007). p16 and Ki-67 immunostaining in atypical immature squamous metaplasia of the uterine cervix: correlation with human papillomavirus detection. Archives of Pathology & Laboratory Medicine, 131, 1343–1349. doi: http://doi.org/10.5858/2007-131-1343-pakiia
  23. Sari Aslani, F., Safaei, A., Pourjabali, M., Momtahan, M. (2013). Evaluation of Ki67, p16 and CK17 Markers in Differentiating Cervical Intraepithelial Neoplasia and Benign Lesions. Iranian Journal of Medical Sciences, 38 (1), 15–21.
  24. Van den Einden, L. C. G., Grefte, J. M. M., van der Avoort, I. A. M., Vedder, J. E. M., van Kempen, L. C. L. T., Massuger, L. F. A. G., de Hullu, J. A. (2011). Cytology of the vulva: feasibility and preliminary results of a new brush. British Journal of Cancer, 106 (2), 269–273. doi: http://doi.org/10.1038/bjc.2011.533
  25. Jiménez-Ayala, M., Jiménez-Ayala, B. (2002). Terminology for Vulvar Cytology Based on the Bethesda System. Acta Cytologica, 46 (4), 645–650. doi: http://doi.org/10.1159/000326969
  26. Stabile, S. A. B., Evangelista, D. H. R., Talamonte, V. H., Lippi, U. G., Lopes, R. G. C. (2012). Comparative study of the results from conventional cervico-vaginal oncotic cytology and liquid-based cytology. Einstein (São Paulo), 10 (4), 466–472. doi: http://doi.org/10.1590/s1679-45082012000400013
  27. Levine, T. S., Rolfe, K. J., Crow, J., Styles, S., Perrett, C. W., Maclean, A. B., Reid, W. M. N. (2001). The use of cytospin monolayer technique in the cytological diagnosis of vulval and anal disease. Cytopathology, 12 (5), 297–305. doi: http://doi.org/10.1046/j.1365-2303.2001.00348.x
  28. Ouh, Y.-T., Park, J. J., Kang, M., Kim, M., Song, J. Y., Shin, S. J. et. al. (2021). Discrepancy between Cytology and Histology in Cervical Cancer Screening: a Multicenter Retrospective Study (KGOG 1040). Journal of Korean Medical Science, 36 (24). doi: http://doi.org/10.3346/jkms.2021.36.e164

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-09-30

Як цитувати

Дунаєвська, В. В., Логінова, Є. О., Боцюн, П. М., & Богоніс, Н. В. (2022). Аналіз результатів цитологічного дослідження при вульварній інтраепітеліальній неоплазії в порівнянні з гістологічним заключенням. ScienceRise: Medical Science, (5 (50), 41–46. https://doi.org/10.15587/2519-4798.2022.263490

Номер

Розділ

Медичні науки