Теоретичне обґрунтування вибору способів культивування клітин ссавців як основа конструювання мембранних біореакторів у відповідності з вимогами належної виробничої практики

Автор(и)

  • Сергій Миколайович Семенюк Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського»; Фармацевтична корпорація «Артеріум», Україна https://orcid.org/0000-0003-4136-8365
  • Вадим Миколайович Поводзинський Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського», Україна https://orcid.org/0000-0002-9591-909X
  • Владислав Юрійович Шибецький Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського», Україна https://orcid.org/0000-0001-5482-0838

DOI:

https://doi.org/10.15587/2706-5448.2021.229666

Ключові слова:

технологічні системи культивування, конструкція біореактору, клітини ссавців, активний фармацевтичний інгредієнт, біологічний агент, належна виробнича практика

Анотація

Об’єктом дослідження є технологічні системи культивування, центральним елементом яких є біореактори, що забезпечують ефективний метаболізм клітин ссавців (Metazoa). Принципові відмінності в фенотипічних характеристиках клітин ссавців від мікроорганізмів і особливий фазово-гідродинамічний стан системи культивування формують особливі вимоги щодо конструювання та експлуатації біореакторів. Одним з найбільш проблемних місць в процесі використання клітинних культур для отримання лікарських засобів біологічного походження є забезпечення коректних умов культивування з метою отримання максимальної кількості цільового продукту. В основі системи забезпечення якості виробництва лікарських засобів є належна виробнича практика, що висуває ряд загальних вимог щодо організації виробництва лікарських засобів встановленої якості, ефективності та безпечності.

В ході дослідження проаналізовано фенотипічні характеристики клітин ссавців. Проведено аналіз промислових систем культивування та запропоновано нову класифікацію, яка враховує фазово-гідродинамічний стан культури та специфіку гідродинаміки біореактора. Проведений аналіз дозволив визначити мембранні системи культивування як найбільш перспективні. Вибір даної системи культивування має ряд особливостей, зокрема, забезпечення сприятливих умов протягом тривалого процесу культивування поверхневозалежних клітин. Дана система гарантує постійне та ефективне підведення поживних речовин, в тому числі розчиненого кисню, та відведення продуктів життєдіяльності. Широкий вибір матеріалів для виготовлення мембран дозволяє використовувати індивідуальний підхід до різних клітинних ліній. Завдяки чому забезпечується отримання високих показників культивування – щільність клітин на поверхні росту, забезпечення необхідними речовинами протягом всього процесу культивування без негативного механічного впливу на клітини. Модульність конструкції мембранних елементів дозволяє масштабувати процес культивування від лабораторної розробки до промислового культивування. Отримані в даній роботі результати можуть бути вихідними даними при дослідженні гідродинамічних та масообмінних характеристик та при розробці та конструюванні нових біореакторів, що дозволить скоротити етап лабораторної розробки та прискорити впровадження інноваційних лікарських засобів.

Біографії авторів

Сергій Миколайович Семенюк, Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського»; Фармацевтична корпорація «Артеріум»

Аспірант

Кафедра біотехніки та інженерії

Вадим Миколайович Поводзинський, Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського»

Кандидат технічних наук, доцент

Кафедра біотехніки та інженерії

Владислав Юрійович Шибецький, Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського»

Кандидат технічних наук, доцент

Кафедра біотехніки та інженерії

Посилання

  1. ST-N MOZU 42-3.4:2020 Likarski zasoby nastanova z vyrobnytstva hotovykh likarskykh zasobiv (2020). Kyiv: Ministerstvo okhorony zdorovia Ukrainy. Available at: https://compendium.com.ua/uk/clinical-guidelines-uk/standartizatsiya-farmatsevtichnoyi-produktsiyi-tom-3/st-n-mozu-42-3-4-2020/
  2. Petrelli, F., Caraffa, A., Scuri, S., Grappasonni, I., Magrini, E., Cocchini, A. (2019). The requirements for manufacturing highly active or sensitising drugs comparing Good Manufacturing Practices. Acta bio-medica, 90 (2), 288–299. doi: http://doi.org/10.23750/abm.v90i2.8340
  3. Salehi-Nik, N., Amoabediny, G., Pouran, B., Tabesh, H., Shokrgozar, M. A., Haghighipour, N. et. al. (2013). Engineering Parameters in Bioreactor’s Design: A Critical Aspect in Tissue Engineering. BioMed Research International, 2013, 1–15. doi: http://doi.org/10.1155/2013/762132
  4. Petrov, I., Neguliaev, I. (2011). Srednii razmer kletki kak faktor, otrazhaiuschii vzaimodeistvie kletok linii SNO v protsesse ikh proliferatsii. Tsitologiia, 53 (8), 671–678.
  5. Eibl, R., Eibl, D., Pörtner, R., Catapano, G., Czermak, P. (2009). Cell and tissue reaction engineering. Springer, 363. doi: http://doi.org/10.1007/978-3-540-68182-3
  6. Ruzhynska, L. I., Shybetskyi, V. Yu., Povodzynskyi, V. M. (2010). Modeliuvannia hidrodynamiky rollernoho fermentera u biotekhnolohii vaktsyn. Naukovyi visnyk Lvivskoho natsionalnoho universytetu veterynarnoi medytsyny ta biotekhnolohii imeni S. Z. Gzhytskoho, 12 (2-4 (44)), 76–81.
  7. Shybetskiy, V., Semeniuk, S., Kostyk, S. (2017). Design of consrtuction and hydrodynamic modeling in a roller bioreactor with surface cultivation of cell cultures. ScienceRise, 7 (36), 53–59. doi: http://doi.org/10.15587/2313-8416.2017.107176
  8. Radaeva, I., Dumchenko, N., Nechaeva, E. (2019). The cultivation of cells on microcarriers in bioreactors. PNRPU Bulletin. Chemical Technology and Biotechnology, 2, 22–32. doi: http://doi.org/10.15593/2224-9400/2019.2.02
  9. Julaey, M., Hosseini, M., Amani, H. (2016). Stem Cells Culture Bioreactor Fluid Flow, Shear Stress and Microcarriers Dispersion Analysis Using Computational Fluid Dynamics. Journal of Applied Biotechnology Reports, 3 (2), 425–431.
  10. Pinxteren, J. A. M., Craeye, D. (2012). Pat. US 2012/0308531 A1. Expansion of Stem Cells in Hollow Fiber Bioreactors. MPK: C12M23/16. published: 06.12.2012.
  11. Yan, I. K., Shukla, N., Borrelli, D. A., Patel, T. (2018). Use of a Hollow Fiber Bioreactor to Collect Extracellular Vesicles from Cells in Culture. Methods in Molecular Biology. Extracellular RNA, 35–41. doi: http://doi.org/10.1007/978-1-4939-7652-2_4
  12. Dhainaut, F., Meterreau, J. L., Mas, M. P., Potentini, C., Mignot, G. (1992). Scale-up of human IgG1 production by a lymphoblastoid cell line in hollow fiber systems. Animal Cell Technology, 527–259. doi: http://doi.org/10.1016/b978-0-7506-0421-5.50118-5
  13. Vachette, E., Fenge, C., Cappia, J. M., Delaunay, L., Greller, G., Barbaroux, M. (2014). Robust and convenient single-use processing: The superior strength and flexibility of flexsafe bags. BioProcess International, 12.
  14. Frahm, B., Brod, H. (2011). Improving Cell Culture Bioreactor Performance for Sensitive Cell Lines by Dynamic Membrane Aeration (DMA). Proceedings of the 21st Annual Meeting of the European Society for Animal Cell Technology (ESACT). Dublin, 355–358. doi: http://doi.org/10.1007/978-94-007-0884-6_56

##submission.downloads##

Опубліковано

2021-04-30

Як цитувати

Семенюк, С. М., Поводзинський, В. М., & Шибецький, В. Ю. (2021). Теоретичне обґрунтування вибору способів культивування клітин ссавців як основа конструювання мембранних біореакторів у відповідності з вимогами належної виробничої практики. Technology Audit and Production Reserves, 2(3(58), 14–19. https://doi.org/10.15587/2706-5448.2021.229666

Номер

Розділ

Хіміко-технологічні системи: Звіт про науково-дослідну роботу