Модуляція властивостей мезенхімальних стромальних клітин мікрооточенням у 3D культурі

Автор(и)

  • Олександр Юрійович Петренко Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна http://orcid.org/0000-0002-9554-8639
  • Олена Юріївна Рогульська Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна http://orcid.org/0000-0002-4757-0241
  • Наталя Анатоліївна Труфанова Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна http://orcid.org/0000-0002-8718-7490
  • Олег Вікторович Труфанов Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна http://orcid.org/0000-0002-3978-3335
  • Олександра Сергіївна Губеня Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна https://orcid.org/0000-0002-8212-3455
  • Олена Борисівна Ревенко Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна https://orcid.org/0000-0002-1275-1376
  • Дар’я Вікторівна Черкашина Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України, Україна http://orcid.org/0000-0002-0834-2203

DOI:

https://doi.org/10.15587/2519-8025.2023.288082

Ключові слова:

мезенхімальні стромальні клітини, тривимірне культивування, гідрогель з плазми крові, альгінатні мікросфери, макропористі скафолди

Анотація

Мета – порівняння форми, життєздатності, метаболічної та проліферативної активності мезенхімальних стромальних клітин (МСК) за культивування у складі гідрогелів та макропористих скафолдів.

Матеріали та методи. МСК жирової тканини людини виділяли з ліпоаспіратів дорослих здорових донорів після отримання інформованої згоди. Гідрогелі отримували зі збідненої на тромбоцити плазми крові людини та полімеру альгінату, зшитого іонами кальцію у мікросфери. Макропористі скафолди створювали з плазми методом кріотропного гелеутворення. Морфологію та життєздатність клітин у складі носіїв оцінювали, використовуючи вітальні барвники. Метаболічну та проліферативну активність МСК вивчали за допомогою Alamar Blue тесту на 1, 3 і 7-му добу 3D культивування.

Результати. Тривимірні скафолди з плазми крові мали розгалужену структуру пор з розміром, достатнім для проліферації та міграції клітин. Коли білки плазми зшивали L-цистеїном, майже всі МСК були життєздатні, прикріплювались до поверхні пор, розпластувались та проліферували, заповнюючи порожнечі носія. У гідрогелях з плазми МСК заповнювали носій та набували фібробластоподібну морфологію, зберігаючи життєздатність. У альгінатних мікросферах МСК були рівномірно розподілені по всьому об’єму гелю, зберігали сферичну форму, але високу життєздатність. Найвища метаболічна активність МСК спостерігалась у макропористих скафолдах, найнижча – в альгінатних мікросферах. За культивування активність клітин у макропористих скафолдах та гідрогелях з плазми суттєво зростала, що опосередковано свідчило про процеси проліферації.

Висновки. За 3D культивування властивості МСК суттєво залежать від мікрооточення: у складі носіїв, створених з плазми крові, клітини набувають фібробластоподібну морфологію та проліферують, а в альгінатних мікросфери залишаються сферичними та не проліферують

Спонсор дослідження

  • National Research Foundation of Ukraine (project No. 2021.01/0276)

Біографії авторів

Олександр Юрійович Петренко, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Доктор біологічних наук, професор,  завідуючий відділом

Відділ кріобіохімії

Директор інституту

Олена Юріївна Рогульська, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Кандидат біологічних наук, старший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Наталя Анатоліївна Труфанова, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Кандидат біологічних наук, старший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Олег Вікторович Труфанов, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Кандидат біологічних наук, старший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Олександра Сергіївна Губеня, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Молодший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Олена Борисівна Ревенко, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Кандидат біологічних наук, старший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Дар’я Вікторівна Черкашина, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини Національної академії наук України

Кандидат біологічних наук, старший науковий співробітник

Відділ кріобіохімії

Посилання

  1. Renesme, L., Pierro, M., Cobey, K. D., Mital, R., Nangle, K., Shorr, R., Lalu, M. M., Thébaud, B. (2022). Definition and Characteristics of Mesenchymal Stromal Cells in Preclinical and Clinical Studies: A Scoping Review. Stem Cells Translational Medicine, 11 (1), 44–54. doi: https://doi.org/10.1093/stcltm/szab009
  2. Langer, R., Vacanti, J. P. (1993). Tissue Engineering. Science, 260 (5110), 920–926. doi: https://doi.org/10.1126/science.8493529
  3. Rech, J., Getinger-Panek, A., Gałka, S., Bednarek, I. (2022). Origin and Composition of Exosomes as Crucial Factors in Designing Drug Delivery Systems. Applied Sciences, 12 (23), 12259. doi: https://doi.org/10.3390/app122312259
  4. Jensen, C., Teng, Y. (2020). Is It Time to Start Transitioning From 2D to 3D Cell Culture? Frontiers in Molecular Biosciences, 7. doi: https://doi.org/10.3389/fmolb.2020.00033
  5. Tan, L., Liu, X., Dou, H., Hou, Y. (2022). Characteristics and regulation of mesenchymal stem cell plasticity by the microenvironment – specific factors involved in the regulation of MSC plasticity. Genes & Diseases, 9 (2), 296–309. doi: https://doi.org/10.1016/j.gendis.2020.10.006
  6. Dhamecha, D., Movsas, R., Sano, U., Menon, J. U. (2019). Applications of alginate microspheres in therapeutics delivery and cell culture: Past, present and future. International Journal of Pharmaceutics, 569, 118627. doi: https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2019.118627
  7. Pravdyuk, A. I., Petrenko, Y. A., Fuller, B. J., Petrenko, A. Y. (2013). Cryopreservation of alginate encapsulated mesenchymal stromal cells. Cryobiology, 66 (3), 215–222. doi: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.02.002
  8. Tarusin, D., Mazur, S., Volkova, N., Petrenko, Yu., Zaikov, V., Petrenko, A. (2016). Encapsulation of mesenchymal stromal cells in alginate microspheres. Biotechnologia Acta, 9 (4), 58–66. doi: https://doi.org/10.15407/biotech9.04.058
  9. Petrenko, Yu. A., Ivanov, R. V., Petrenko, A. Yu., Lozinsky, V. I. (2011). Coupling of gelatin to inner surfaces of pore walls in spongy alginate-based scaffolds facilitates the adhesion, growth and differentiation of human bone marrow mesenchymal stromal cells. Journal of Materials Science: Materials in Medicine, 22 (6), 1529–1540. doi: https://doi.org/10.1007/s10856-011-4323-6
  10. Elowsson, L., Kirsebom, H., Carmignac, V., Mattiasson, B., Durbeej, M. (2013). Evaluation of macroporous blood and plasma scaffolds for skeletal muscle tissue engineering. Biomaterials Science, 1 (4), 402–410. doi: https://doi.org/10.1039/c2bm00054g
  11. Rogulska, O., Petrenko, Y., Petrenko, A. (2016). DMSO-free cryopreservation of adipose-derived mesenchymal stromal cells: expansion medium affects post-thaw survival. Cytotechnology, 69 (2), 265–276. doi: https://doi.org/10.1007/s10616-016-0055-2
  12. Zuk, P. A., Zhu, M., Ashjian, P., De Ugarte, D. A., Huang, J. I., Mizuno, H. et al. (2002). Human Adipose Tissue Is a Source of Multipotent Stem Cells. Molecular Biology of the Cell, 13 (12), 4279–4295. doi: https://doi.org/10.1091/mbc.e02-02-0105
  13. Rogulska, O. Y., Trufanova, N. A., Petrenko, Y. A., Repin, N. V., Grischuk, V. P., Ashukina, N. O. et al. (2021). Generation of bone grafts using cryopreserved mesenchymal stromal cells and macroporous collagen‐nanohydroxyapatite cryogels. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials, 110 (2), 489–499. doi: https://doi.org/10.1002/jbm.b.34927
  14. Dhurat, R., Sukesh, M. (2014). Principles and methods of preparation of platelet-rich plasma: A review and author′s perspective. Journal of Cutaneous and Aesthetic Surgery, 7 (4), 189–197. doi: https://doi.org/10.4103/0974-2077.150734
  15. Lozinsky, V. I., Galaev, I. Yu., Plieva, F. M., Savina, I. N., Jungvid, H., Mattiasson, B. (2003). Polymeric cryogels as promising materials of biotechnological interest. Trends in Biotechnology, 21 (10), 445–451. doi: https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2003.08.002
  16. Dankberg, F., Persidsky, M. D. (1976). A test of granulocyte membrane integrity and phagocytic function. Cryobiology, 13 (4), 430–432. doi: https://doi.org/10.1016/0011-2240(76)90098-5
  17. Petrenko, Yu. A., Gorokhova, N. A., Tkachova, E. N., Petrenko, A. Yu. (2005). The reduction of Alamar Blue by peripheral blood lymphocytes and isolated mitochondria. The Ukrainian Biochemical Journal, 77 (5), 100–105.
  18. Discher, D. E., Mooney, D. J., Zandstra, P. W. (2009). Growth Factors, Matrices, and Forces Combine and Control Stem Cells. Science, 324 (5935), 1673–1677. doi: https://doi.org/10.1126/science.1171643
  19. de Vos, P., Faas, M. M., Strand, B., Calafiore, R. (2006). Alginate-based microcapsules for immunoisolation of pancreatic islets. Biomaterials, 27 (32), 5603–5617. doi: https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2006.07.010
  20. Kumar, V. B., Tiwari, O. S., Finkelstein-Zuta, G., Rencus-Lazar, S., Gazit, E. (2023). Design of Functional RGD Peptide-Based Biomaterials for Tissue Engineering. Pharmaceutics, 15 (2), 345. doi: https://doi.org/10.3390/pharmaceutics15020345
Модуляція властивостей мезенхімальних стромальних клітин мікрооточенням у 3D культурі

##submission.downloads##

Опубліковано

2023-09-30

Як цитувати

Петренко, О. Ю., Рогульська, О. Ю., Труфанова, Н. А., Труфанов, О. В., Губеня, О. С., Ревенко, О. Б., & Черкашина, Д. В. (2023). Модуляція властивостей мезенхімальних стромальних клітин мікрооточенням у 3D культурі. ScienceRise: Biological Science, (3(36), 28–33. https://doi.org/10.15587/2519-8025.2023.288082

Номер

Розділ

Біологічні дослідження