Гліколіпіди фотосинтетичних мембран різних сортів пшениці Triticum aestivum за дії біотичного стресору
DOI:
https://doi.org/10.15587/2519-8025.2016.83552Ключові слова:
моногалактозилдіацилгліцерол, дигалактозилдіацилгліцерол, сульфохіновозилдіацилгліцерол, пшениця, суспензія конідій, церкоспорельоз, біотичний стресорАнотація
Досліджували вміст гліколіпідів фотосинтетичних мембран у проростків пшениці за інфікування збудником церкоспорельозу. Ліпіди розділяли методом тонкошарової хроматографії. Встановили, що для стійкого сорту пшениці характерно поступове зниження вмісту ліпідів; в проростках сприйнятливого сорту за патогенезу динаміка вмісту гліколіпідів відрізнялась. Такі відмінності складу досліджуваних ліпідів пов'язано зі стійкістю сорту за патогенезу
Посилання
- Belava, V. N., Zeleniy, S. B., Panyuta, O. O., Taran, N. Y., Pogribniy, P. V. (2010). Expression of lectin and defensin genes in Mironovskaya 808 and Roazon wheat cultivars infected with Pseudocercosporella herpotrichoides. Biopolymers and Cell, 26 (1), 45–50. doi: 10.7124/bc.000143
- Belava, V., Panyuta ,O., Taran, N. (2008). Model system of infection and level of winter wheat (Triticumaestivum L.) resistance estimation to eyespot agent (Pseudocercosporella herpotrichoides (Fron) Deighton). Karantyni Zakhyst Roslyn, 7, 25–28.
- Svetlova, N. B., Kalinichenko, O. V, Serga, O. I. (2011). Components of lipid-pigment complex of winter wheat leaves wich was inoculated by fosfomobilisation microorganisms. Silskogospodarska nauka – Agricultural Microbiology, 14, 109–120.
- Taran, N. (2006). Plants lipids. Kyiv: Lenvit, 104.
- Ahmad, P., John, R., Sarwat, M., Umar, S. (2012). Responses of proline, lipid peroxidation and antioxidative enzymes in two varieties of Pisumsativum L. under salt stress. International Journal of Plant Production, 2 (4), 353–366.
- Andreou, A., Brodhun, F., Feussner, I. (2009). Biosynthesis of oxylipins in non-mammals. Progress in Lipid Research, 48, 148–170. doi: 10.1016/j.plipres.2009.02.002
- Boudière, L., Michaud, M., Petroutsos, D., Rébeillé, F., Falconet, D., Bastien, O., Block, M. A. (2014). Glycerolipids in photosynthesis: composition, synthesis and trafficking. Biochimicaet Biophysica Acta (BBA)–Bioenergetics, 1837 (4), 470–480. doi: 10.1016/j.bbabio.2013.09.007
- Demidchik, V. (2015). Mechanisms of oxidative stress in plants: from classical chemistry to cell biology. Environmental and Experimental Botany, 109, 212–228. doi: 10.1016/j.envexpbot.2014.06.021
- Dhondt, S., Geoffroy, P., Stelmach, B. A., Legrand, M., Heitz, T. (2000). Soluble phospholipase A2 activity is induced before oxylipin accumulation in tobacco mosaic virus‐infected tobacco leaves and is contributed by patatin‐like enzymes. The Plant Journal, 23 (4), 431–440. doi: 10.1046/j.1365-313x.2000.00802.x
- Endo, H., Imahori, Y. (2014). Changes in hydrogen peroxide and superoxide anion contents and superoxide dismutase activity during the maturation of sweet pepper (Capsicum annuum L.) fruit. In XXIX International Horticultural Congress on Horticulture: Sustaining Lives, Livelihoods and Landscapes (IHC2014), 1120, 399–404.
- Gao, Q. M., Yu, K., Xia, Y., Shine, M. B., Wang, C., Navarre, D., Kachroo, P. (2014). Mono–and digalactosyldiacylglycerol lipids function nonredundantly to regulate systemic acquired resistance in plants. Cell reports, 9 (5), 1681–1691. doi: 10.1016/j.celrep.2014.10.069
- Kalisch, B., Dörmann, P. (2016). Hölzl, G. DGDG and Glycolipids in Plants and Algae. Subcellular Biochemistry, 51–83. doi: 10.1007/978-3-319-25979-6_3
- Mir, R., Hernández, M. L., Abou-Mansour, E., Martínez-Rivas, J. M., Mauch, F., Métraux, J. P., León, J. (2013). Pathogen and Circadian Controlled 1 (PCC1) regulates polar lipid content, ABA-related responses, and pathogen defence in Arabidopsis thaliana. Journal of experimental botany, 64 (11), 3385–3395. doi: 10.1093/jxb/ert177
- Rasool, S., Ahmad, A., Siddiqi, T. O., Ahmad, P. (2013). Changes in growth, lipid peroxidation and some key antioxidant enzymes in chickpea genotypes under salt stress. Acta physiologiae plantarum, 35 (4), 1039–1050. doi: 10.1007/s11738-012-1142-4
- Rivas, S., Heitz, T. (2014). Phospholipase A in Plant Immunity. Signaling and Communication in Plants, 183–205. doi: 10.1007/978-3-642-42011-5_10
- Rojas, C. M., Senthil-Kumar, M., Tzin V., Mysore K. S. (2014). Regulation of primary plant metabolism during plant–pathogen interactions and its contribution to plant defense. Frontiers in Plant Science, 5, 17. doi: 10.3389/fpls.2014.00017
- Siebers, M., Brands, M., Wewer, V., Duan, Y., Hölzl, G., Dörmann, P. (2016). Lipids in plant–microbe interactions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology of Lipids, 1861 (9), 1379–1395. doi: 10.1016/j.bbalip.2016.02.021
- Suzuki, N., Koussevitzky, S., Mittler, R. O. N., Miller, G. A. D. (2012). ROS and redox signalling in the response of plants to abiotic stress. Plant, Cell & Environment, 35 (2), 259–270. doi: 10.1111/j.1365-3040.2011.02336.x
- Upchurch, R. G. (2008). Fatty acid unsaturation, mobilization, and regulation in the response of plants to stress. Biotechnology letters, 30 (6), 967–977. doi: 10.1007/s10529-008-9639-z
- Vu, H. S., Tamura, P., Galeva, N. A., Chaturvedi, R., Roth, M. R., Williams, T. D., Welti, R. (2012). Direct infusion mass spectrometry of oxylipin-containing Arabidopsis membrane lipids reveals varied patterns in different stress responses. Plant physiology, 158 (1), 324–339. doi: 10.1104/pp.111.190280
- Walley, J. W., Kliebenstein, D. J., Bostock, R. M., Dehesh, K. (2013). Fatty acids and early detection of pathogens. Current opinion in plant biology, 16 (4), 520–526. doi: 10.1016/j.pbi.2013.06.011
- Zoeller, M., Stingl, N., Krischke, M., Fekete, A., Waller, F., Berger, S., Mueller, M. J. (2012). Lipid profiling of the Arabidopsis hypersensitive response reveals specific lipid peroxidation and fragmentation processes: biogenesis of pimelic and azelaic acid. Plant Physiology, 160 (1), 365–378. doi: 10.1104/pp.112.202846
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2016 Світлана Вячеславівна Фомаїді, Вікторія Назарівна Белава, Ольга Олександрівна Панюта, Наталія Юріївна Таран
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Наше видання використовує положення про авторські права Creative Commons CC BY для журналів відкритого доступу.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
1. Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons CC BY, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
2. Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.