Дія хондроїтин сульфату натрію на вільнорадикальні процеси у хрящовій тканині щурів при остеоартрозі

Автор(и)

  • Yelizaveta Tikhova Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601, Україна
  • Katerina Dvorshchenko Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601, Україна
  • Oleksandr Korotkyi Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601, Україна
  • Volodymyr Vereschaka Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15587/2519-8025.2017.109318

Ключові слова:

остеоартроз, окисний стрес, перекисне окиснення ліпідів, хрящі, хондроїтина сульфат

Анотація

Встановлено, що при остеоартрозі, індукованого введенням монойодацетату натрію у хрящовій тканині колінних суглобів зростає вміст активних форм кисню та продуктів перекисного окиснення ліпідів. Виявлено, що при введенні препарату на основі хондроїтина сульфату натрію знижується вміст активних форм кисню та продуктів перекисного окиснення ліпідів у хрящовій тканині щурів з хімічно викликаним остеоартрозом

Біографії авторів

Yelizaveta Tikhova, Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601

Аспірант

Кафедра біохімії

ННЦ «Інститут біології та медицини» 

Katerina Dvorshchenko, Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601

Доктор біологічних наук, Завідувач науково-дослідної лабораторії

Лабораторія «Біохімії»

ННЦ «Інститут біології та медицини» 

Oleksandr Korotkyi, Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601

Кандидат біологічних наук, доцент

кафедра біохімії

ННЦ «Інститут біології та медицини»

Volodymyr Vereschaka, Київський національний університет імені Тараса Шевченка вул. Володимирська, 64/13, м. Київ, Україна, 01601

Доктор медичних наук, старший науковий співробітник

Кафедра НДЛ "Фізико-хімічної біології"

ННЦ «Інститут біології та медицини»

Посилання

  1. Martin, J. A., Buckwalter, J. A. (2002). Aging, articular cartilage chondrocyte senescence and osteoarthritis. Biogerontology, 3 (5), 257–264. doi: 10.1023/a:1020185404126
  2. Malfait, A. M. (2016). Osteoarthritis year in review 2015: biology. Osteoarthritis and Cartilage, 24 (1), 21–26. doi: 10.1016/j.joca.2015.09.010
  3. Sawitzke, A. D., Shi, H., Finco, M. F., Dunlop, D. D., Bingham, C. O., Harris, C. L. et. al. (2008). The effect of glucosamine and/or chondroitin sulfate on the progression of knee osteoarthritis: A report from the glucosamine/chondroitin arthritis intervention trial. Arthritis & Rheumatism, 58 (10), 3183–3191. doi: 10.1002/art.23973
  4. Clegg, D. O. Reda, D. J., Harris, C. L., Klein, M. A., O'Dell, J. R., Hooper, M. M. et. al. (2006). Glucosamine, chondroitin sulfate, and the two in combination for painful knee osteoarthritis. New England Journal of Medicine, 354 (8), 795–808.
  5. Wildi, L. M., Raynauld, J.-P., Martel-Pelletier, J., Beaulieu, A., Bessette, L., Morin, F. et. al. (2011). Chondroitin sulphate reduces both cartilage volume loss and bone marrow lesions in knee osteoarthritis patients starting as early as 6 months after initiation of therapy: a randomised, double-blind, placebo-controlled pilot study using MRI. Annals of the Rheumatic Diseases, 70 (6), 982–989. doi: 10.1136/ard.2010.140848
  6. Sawitzke, A. D., Shi, H., Finco, M. F., Dunlop, D. D., Harris, C. L., Singer, N. G. et. al. (2010). Clinical efficacy and safety of glucosamine, chondroitin sulphate, their combination, celecoxib or placebo taken to treat osteoarthritis of the knee: 2-year results from GAIT. Annals of the Rheumatic Diseases, 69 (8), 1459–1464. doi: 10.1136/ard.2009.120469
  7. Gus'kova, T. A. (2010). Doklinicheskoe toksikologicheskoe izuchenie lekarstvennyh sredstv kak garantiya bezopasnosti provedeniya ih klinicheskih issledovaniy. Toksikologicheskiy vestnik, 5, 2–5.
  8. Hartree, E. F. (1972). Determination of protein: A modification of the lowry method that gives a linear photometric response. Analytical Biochemistry, 48 (2), 422–427. doi: 10.1016/0003-2697(72)90094-2
  9. Sutherland, M. W., Learmonth, B. A. (1997). The Tetrazolium Dyes MTS and XTT Provide New Quantitative Assays for Superoxide and Superoxide Dismutase. Free Radical Research, 27 (3), 283–289. doi: 10.3109/10715769709065766
  10. Able, A. J., Guest, D. I., Sutherland, M. W. (1998). Use of a New Tetrazolium-Based Assay to Study the Production of Superoxide Radicals by Tobacco Cell Cultures Challenged with Avirulent Zoospores of Hashimoto, S. (1974). A new spectrophotometric assay method of xanthine oxidase in crude tissue homogenate. Analytical Biochemistry, 62 (2), 426–435. doi: 10.1016/0003-2697(74)90175-4
  11. Phytophthora parasiticavarnicotianae. Plant Physiology, 117 (2), 491–499. doi: 10.1104/pp.117.2.491
  12. Gay, C. A., Gebicki, J. M. (2003). Measurement of protein and lipid hydroperoxides in biological systems by the ferric–xylenol orange method. Analytical Biochemistry, 315 (1), 29–35. doi: 10.1016/s0003-2697(02)00606-1
  13. Gavrilov, V. B., Gavrilova, A. R., Hmara, N. F. (1988). Izmerenie dienovyh konyugatov v plazme krovi po UF-pogloshcheniyu geptanovyh i izopropanol'nyh ekstraktov. Laboratornoe delo, 2, 540–546.
  14. Kolesova, O. E., Markin, A. A., Fedorova, T. N. (1984). Perekisnoe okislenie lipidov i metody opredeleniya produktov lipoperoksidatsii v biologicheskih seredah. Laboratornoe delo, 9, 60–63.
  15. Orekhovich, V. N. (Ed.) (1977). Sovremennye metody v biohimii. Moscow: Meditsina, 392.
  16. Nasledov, A. D. (2006). Matematicheskie metody psihologicheskogo issledovaniya. Saint Petersburg: Rech', 166.
  17. Koike, M., Nojiri, H., Ozawa, Y., Watanabe, K., Muramatsu, Y., Kaneko, H. et. al. (2015). Mechanical overloading causes mitochondrial superoxide and SOD2 imbalance in chondrocytes resulting in cartilage degeneration. Scientific Reports, 5 (1). doi: 10.1038/srep11722
  18. Hille, R. (2006). Structure and Function of Xanthine Oxidoreductase. European Journal of Inorganic Chemistry, 2006 (10), 1913–1926. doi: 10.1002/ejic.200600087
  19. Aibibula, Z., Ailixiding, M., Iwata, M., Piao, J., Hara, Y., Okawa, A., Asou, Y. (2016). Xanthine oxidoreductase activation is implicated in the onset of metabolic arthritis. Biochemical and Biophysical Research Communications, 472 (1), 26–32. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.02.039
  20. Stabler, T., Zura, R. D., Hsueh, M.-F., Kraus, V. B. (2015). Xanthine oxidase injurious response in acute joint injury. Clinica Chimica Acta, 451, 170–174. doi: 10.1016/j.cca.2015.09.025
  21. Hanachi, N. et. al. (2009). Comparison of xanthine oxidase levels in synovial fluid from patients with rheumatoid arthritis and other joint inflammations. Saudi medical journal, 30 (11), 1422–1425.
  22. Na, J.-Y., Song, K., Kim, S., Kwon, J. (2016). Rutin protects rat articular chondrocytes against oxidative stress induced by hydrogen peroxide through SIRT1 activation. Biochemical and Biophysical Research Communications, 473 (4), 1301–1308. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.04.064
  23. Rojkind, M., Dominguez-Rosales, J.-A., Nieto, N., Greenwel, P. (2002). Role of hydrogen peroxide and oxidative stress in healing responses. Cellular and Molecular Life Sciences, 59 (11), 1872–1891. doi: 10.1007/pl00012511
  24. Henrotin, Y., Bruckner, P., Pujol, J.-P. (2003). The role of reactive oxygen species in homeostasis and degradation of cartilage. Osteoarthritis and Cartilage, 11 (10), 747–755. doi: 10.1016/s1063-4584(03)00150-x
  25. Berlett, B. S., Stadtman, E. R. (1997). Protein Oxidation in Aging, Disease, and Oxidative Stress. Journal of Biological Chemistry, 272 (33), 20313–20316. doi: 10.1074/jbc.272.33.20313
  26. Del Rio, D., Stewart, A. J., Pellegrini, N. (2005). A review of recent studies on malondialdehyde as toxic molecule and biological marker of oxidative stress. Nutrition, Metabolism and Cardiovascular Diseases, 15 (4), 316–328. doi: 10.1016/j.numecd.2005.05.003
  27. Dalle-Donne, I., Rossi, R., Giustarini, D., Milzani, A., Colombo, R. (2003). Protein carbonyl groups as biomarkers of oxidative stress. Clinica Chimica Acta, 329 (1-2), 23–38. doi: 10.1016/s0009-8981(03)00003-2
  28. Tiku, M. L., Shah, R., Allison, G. T. (2000). Evidence Linking Chondrocyte Lipid Peroxidation to Cartilage Matrix Protein Degradation. Journal of Biological Chemistry, 275 (26), 20069–20076. doi: 10.1074/jbc.m907604199
  29. Henrotin, Y., Kurz, B., Aigner, T. (2005). Oxygen and reactive oxygen species in cartilage degradation: friends or foes? Osteoarthritis and Cartilage, 13 (8), 643–654. doi: 10.1016/j.joca.2005.04.002
  30. Tiku, M., Allison, G., Naik, K., Karry, S. (2003). Malondialdehyde oxidation of cartilage collagen by chondrocytes. Osteoarthritis and Cartilage, 11 (3), 159–166. doi: 10.1016/s1063-4584(02)00348-5
  31. Badokin, V. V. (2009). Preparaty hondroitina sul'fata v terapii osteoartroza. RMZH «Revmatologiya», 21, 1461.
  32. Anikin, S. G., Alekseeva, L. I. (2012). Chondroitin sulfate: the mechanisms of action, its efficacy and safety in the therapy of osteoarthrosis. Modern Rheumatology Journal, 3, 78. doi: 10.14412/1996-7012-2012-753

##submission.downloads##

Опубліковано

2017-08-31

Як цитувати

Tikhova, Y., Dvorshchenko, K., Korotkyi, O., & Vereschaka, V. (2017). Дія хондроїтин сульфату натрію на вільнорадикальні процеси у хрящовій тканині щурів при остеоартрозі. ScienceRise: Biological Science, (4 (7), 26–30. https://doi.org/10.15587/2519-8025.2017.109318

Номер

Розділ

Біологічні науки