Determination of the optimal parameters and ionization products of riboxinum

Mykola Rosada; Nataliia Bevz; Victoria Georgiyants

doi:10.15587/2519-4852.2017.113512

Автор(и)

Mykola Rosada Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002, Україна https://orcid.org/0000-0001-8435-7370
Nataliia Bevz Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002, Україна https://orcid.org/0000-0002-7259-8908
Victoria Georgiyants Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002, Україна https://orcid.org/0000-0001-8794-8010

DOI:

https://doi.org/10.15587/2519-4852.2017.113512

Ключові слова:

похідні пурину, рибоксин, біологічні зразки, іонізація, фрагментація, мас-спектрометрія

Анотація

Мас-спектрометрія на сьогоднішній день є одним з найбільш широко застосованим експресним методом аналізу, який використовується для встановлення будови як індивідуальних синтетичних та природних органічних сполук, так і їх сумішей. Одним із способів встановлення будови досліджуваної сполуки цим методом є автоматичне порівняння зареєстрованого спектра з банком спектрів, введених в пам'ять комп'ютера.

Мета. Метою дослідження є визначення оптимальних параметрів іонізації та вивчення фрагментації рибоксину при іонізації з подальшим поповненням бібліотеки спектрів приладу.

Методи. Мас-спектрометрія з використанням різних систем для утворення як материнського, так і дочірнього іона з подальшим використанням отриманих даних для підвищення селективності і покращення чутливості методу.

Результати дослідження. У результаті проведених досліджень вивчена схема фрагментації рибоксину при іонізації на мас-спектрометрі з трійним квадруполем. Встановлені оптимальні параметри іонізації рибоксину: режим іонізації: позитивний; осушуючий газ: 15 л/хв; газ завіси: 8 л/хв; напруга іонізації: 5000.0 kV; температура осушуючого газу: 300.0 °С; потенціал декластеризації: 40.0 V; потенціал фокусування: 200.0 V; вхідний потенціал на Q0: 10.0 V; енергія колізії (Q2): 20.0 V; потенціал на виході з камери зіткнень (Q2): 25.0 V.

Висновки. Отримані результати досліджень є основою для розробки методики кількісного визначення рибоксину у біологічних зразках методом високоефективної рідинної хроматографії з мас-спектрометричним детектуванням

Біографії авторів

Mykola Rosada, Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002

Аспірант

Кафедра фармацевтичної хімії

Nataliia Bevz, Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002

Кандидат фармацевтичних наук, доцент

Кафедра фармацевтичної хімії

Victoria Georgiyants, Національний фармацевтичний університет вул. Пушкінська, 53, м. Харків, Україна, 61002

Доктор фармацевтичних наук, професор, завідувач кафедри

Кафедра фармацевтичної хімії

Посилання

Farthing, D., Sica, D., Gehr, T., Wilson, B., Fakhry, I., Larus, T. et. al. (2007). An HPLC method for determination of inosine and hypoxanthine in human plasma from healthy volunteers and patients presenting with potential acute cardiac ischemia. Journal of Chromatography B, 854 (1-2), 158–164. doi: 10.1016/j.jchromb.2007.04.013
Platonova, N. A. (2006). Farmakodinamika bemitila i riboksina u bol'nykh s khronicheskoy serdechnoy nedostatochnost'yu. Vestnik VolgGMU, 1, 50–51.
Farthing, D. E. (2008). Investigation of inosine and hypoxanthine as biomarkers of cardiac ischemia in plasma of nontraumatic chest pain patients and a rapid analytical system for assessment. Virginia: Virginia Commonwealth University Richmond, 211.
Hsu, W.-Y., Lin, W.-D., Tsai, Y., Lin, C.-T., Wang, H.-C., Jeng, L.-B. et. al. (2011). Analysis of urinary nucleosides as potential tumor markers in human breast cancer by high performance liquid chromatography/electrospray ionization tandem mass spectrometry. Clinica Chimica Acta, 412 (19-20), 1861–1866. doi: 10.1016/j.cca.2011.06.027
Kugler, G. (1978). A column chromatographic method for determination of plasma and erythrocyte levels of inosine and hypoxanthine. Analytical Biochemistry, 90 (1), 204–210. doi: 10.1016/0003-2697(78)90024-6
Chitta, R., Pendela, M., Yekkala, R., Herijgers, P., Hoogmartens, J., Adams, E. (2010). Determination of Adenosine and Inosine in Sheep Plasma Using Solid Phase Extraction Followed by Liquid Chromatography with UV Detection. Analytical Letters, 43 (14), 2267–2274. doi: 10.1080/00032711003717323
Severini, G., AIlberti, L. M. (1987). Liquid-Chromatographic Determination of Inosine, Xanthine, and Hypoxanthine in Uremic Patients Receiving Hemodialysis Treatment. Clinical Chemistry, 33 (12), 2278–2280.
Jimmerson, L. C., Bushman, L. R., Ray, M. L., Anderson, P. L., Kiser, J. J. (2016). A LC-MS/MS Method for Quantifying Adenosine, Guanosine and Inosine Nucleotides in Human Cells. Pharmaceutical Research, 34 (1), 73–83. doi: 10.1007/s11095-016-2040-z
Inoue, K., Obara, R., Hino, T., Oka, H. (2010). Development and Application of an HILIC-MS/MS Method for the Quantitation of Nucleotides in Infant Formula. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58 (18), 9918–9924. doi: 10.1021/jf102023p
Jabs, C. M., Neglen, P., Ekiof, B., Thomas, E. J. (1990). Adenosine, Inosine, and Hypoxanthine/Xanthine Measured in Tissue and Plasma by a Luminescence Method. Clinical Chemistry, 36 (1), 81–87.
Zhao, H.-Q., Wang, X., Li, H.-M., Yang, B., Yang, H.-J., Huang, L. (2013). Characterization of Nucleosides and Nucleobases in Natural Cordyceps by HILIC–ESI/TOF/MS and HILIC–ESI/MS. Molecules, 18 (8), 9755–9769. doi: 10.3390/molecules18089755
Chen, F., Zhang, F., Yang, N., Liu, X. (2014). Simultaneous Determination of 10 Nucleosides and Nucleobases in Antrodia camphorata Using QTRAP LC–MS/MS. Journal of Chromatographic Science, 52 (8), 852–861. doi: 10.1093/chromsci/bmt128
Klyuev, N. A., Brodskiy, E. S. (2002). Sovremennye metody mass-spektrometricheskogo analiza organicheskikh soedineniy. Rossiyskiy Khimicheskiy Zhurnal, XLVI (4), 57–63.