Порівняння ергономічності методів інокуляції мікроорганізмів на щільні живильні середовища

Автор(и)

  • Тарас П'ятковський Тернопільський національний медичний університет ім. І.Я. Горбачевького , Україна
  • Олена Покришко Тернопільський національний медичний університет ім. І.Я. Горбачевького МОЗ України, Україна

DOI:

https://doi.org/10.5281/zenodo.8048366

Анотація

Вступ. Ергономічність є важливою складовою безпеки та ефективності роботи в мікробіологічній лабораторії, тривалість мікробіологічних досліджень може впливати на результати та продуктивність роботи лабораторії. Рутинні мікробіологічні дослідження вимагають використання одноразових та багаторазових матеріалів та затрату часу [3-5]. Існують різні методи, які підтримують стерильність експериментальних матеріалів та дозволяють успішно виділити колонії бактерій. Метою роботи було порівняти ергономічність, ефективність та якість інокулювання поверхні агару у чашці Петрі шпателем Дригальського та скляними стерильними кульками. Матеріали та методи. Для експериментів використовували суспензію добових культур E. coli ATCC 25922 та S. aureus ATCC 6538. У половині чашок інокулят розтирали по поверхні шпателем. У іншій половині стерильні кульки висипалися у чашки Петрі, закривали кришками і легенько струшували з боку в бік для рівномірного розповсюдження інокуляту по поверхні агару. Чашки Петрі інкубували при 37 °C протягом 24-48 год з наступним підрахунком колоній. Час на підготовку та проведення експерименту засікався секундоміром CASIO HS-3V-1RET. Враховувався час на обгортання шпателів, підготовку пробірок з кульками, час на розповсюдження інокуляту цими засобами. Час на стерилізацію сухим гарячим повітрям та автоклавуванням не враховувався. При розрахунку середніх величин в якості похибки використовували середнє квадратичне відхилення (M ± sd). Для статистичного аналізу використовували середні значення кількості колонієутворюючих одиниць (КУО), виражені в логарифмічних значеннях. Експеримент проводили тричі, порівняння середніх проводили з використанням t-критерію Стьюдента. Відмінності при р < 0,05 вважали значущими. Результати та обговорення. Час на підготовку матеріалів та проведення інокуляції виявився коротшим для шпателів, ніж ніж на підготовку скляних кульок для інокуляції 5 чашок Петрі. Проте зівномірність інокулювання була візуально кращою при використанні кульок. При інокуляції суспензії з високою щільністю мікроорганізмів спостерігалися помітні скупчення колоній, які відповідали ходу рухів шпателя.Обидва методи показали статистично одинакову кількість КУО для обох тест-штамів, яка становила приблизно 8 log КУО/мл, що відповідало очікуванням при використанні оптичного стандарту мутності 0,5 одиниць за шкалою McFarland.  Висновки. Метод Копакабана займає більше часу для підготовки і у використанні, проте дає кращі результати у дисперсії бактерій по поверхні щільних середовищ для отримання ізольованих колоній. За результатами підрахунку колонієутворюючих одиниць інокуляція скляними кульками відповідає інокуляції шпателем. Цей метод може використовуватися при мікробіологічних дослідженнях із застосуванням серійних розведень для інокуляції великої кількості чашок Петрі.

Біографії авторів

Тарас П'ятковський, Тернопільський національний медичний університет ім. І.Я. Горбачевького

 

 

Олена Покришко, Тернопільський національний медичний університет ім. І.Я. Горбачевького МОЗ України

доцент кафедрі микробиологии, вирусологии и иммунологии

Посилання

Zukowska ME. Advanced methods of bacteriological identification in a clinical microbiology laboratory. Journal of Pre-Clinical and Clinical Research. 2021;15(2).

Ogunware AE, Adedigba PA, Oyende YE, Adekoya AA, Daramola AR. Physicochemical, bacteriological and biochemical assessment of water samples from unprotected wells in Lagos state metropolis. Asian Journal of Biochemistry, Genetics and Molecular Biology. 2020 May 8;3(4):24-36.

Zhou P, Liu Z, Chen Y, Xiao Y, Huang X, Fan XG. Bacterial and fungal infections in COVID-19 patients: a matter of concern. Infection Control & Hospital Epidemiology. 2020 Sep;41(9):1124-5.

Farnsworth CW, Wallace MA, Liu A, Gronowski AM, Burnham CA, Yarbrough ML. Evaluation of the risk of laboratory microbial contamination during routine testing in automated clinical chemistry and microbiology laboratories. Clinical chemistry. 2020 Sep 1;66(9):1190-9.

Sánchez-Romero MI, Moya JM, López JJ, Mira NO. Collection, transport and general processing of clinical specimens in Microbiology laboratory. Enfermedades infecciosas y microbiologia clinica (English ed.). 2019 Feb 1;37(2):127-34.

Savelyev Y, Gonchar A, Movchan B, Gornostay A, Vozianov S, Rudenko A, Rozhnova R, Travinskaya T. Antibacterial polyurethane materials with silver and copper nanoparticles. Materials Today: Proceedings. 2017 Jan 1;4(1):87-94.

Risandi A, Fuady R, Sukmawati D, Husna SN, Nurjayadi M, Enshasy HE, Ridawati R. Isolation and screening of amylolytic yeast from Paphiopedilum sp., originating from Bedugul Botanical Garden, Bali, Indonesia. InJournal of Physics: Conference Series 2019 Dec 1 (Vol. 1402, No. 3, p. 033060). IOP Publishing.

Worthington MT, Luo RQ, Pelo J. Copacabana method for spreading E. coli and yeast colonies. BioTechniques. 2001 Apr;30(4):738-42.

Sanders ER. Aseptic laboratory techniques: plating methods. JoVE (Journal of Visualized Experiments). 2012 May 11(63):e3064.

Prusokas A, Hawkins M, Nieduszynski CA, Retkute R. Effectiveness of glass beads for plating cell cultures. Physical Review E. 2021 May 17;103(5):052410.

##submission.downloads##

Опубліковано

2023-06-16

Як цитувати

П’ятковський, Т., & Покришко, О. (2023). Порівняння ергономічності методів інокуляції мікроорганізмів на щільні живильні середовища. Анали Мечниковського Інституту, (2), 45–48. https://doi.org/10.5281/zenodo.8048366

Номер

Розділ

Дослідні статті